膜肿瘤坏死因子(TNF) 生物学活性检测
 
    多聚甲醛固定后的效应细胞或直接用效应细胞的胞膜(其膜表面有跨膜型TNF-a),按一定比例加入靶细胞,如L929,以观察跨膜型TNF-a对靶细胞的细胞毒活性。
 
    1.材料  ①L929细胞株;②1%多聚甲醛溶于RPMI-1640培养液中;③PBS,pH7.2;④0.5%MFIT。
 
    2.多聚甲醛固定法
    (1)以105/孔效应细胞置96孔培养板培养,可加用刺激物,如LPS(100ns/mL)刺激一定时间后,弃上清。
    (2)PBS洗一次后,用1%多聚甲醛RPMI—1640室温下固定15—20min,用PBS洗数次以去除多余甲醛。
    (3)按效/靶细胞为10:1的比例加入靶细胞104/孔,分别设仅有靶细胞的对照组及仅有效应细胞的对照组,终末体积100uL,37C,培养48h。
    (4)加入10uLMTF/孔,孵育4ho
    (5)再加入100gL0.IMmol/LHCl/10%SDS,37℃过夜。
    (6)于波长570nm或630nm下测OD值。
 
    3.单核细胞膜提取法
    (1)单核细胞置于平皿经刺激或不刺激培养后,用RPMI-1640洗三次。
    (2)在平皿中加入0.5mL RPMI-1640,用橡皮刷将单核细胞刮下,悬浮于PBS(含lmmol/LEDTA及lmmol/LPMSF)中。
    (3)破膜  将单核细胞放人“液氮细胞裂解器”,20min,350psi。
    (4)2 500r/min离心10min,取上清。
    (5)将上清置于43%蔗糖(溶于A溶液:10rmnol/L HEPES pH7.33mmol/LMgCl2),200 000Xg离心45rain,在蔗糖界面收集细胞膜。100mmol/L KCI
    (6)用溶液A将细胞膜洗一次,175 000Xg离心60min,以去除残留的蔗糖。
    (7)将膜悬浮于RPMI-1640中,蛋白浓度为2—5mg/mL,—70~C冻存。用于生物活性检测的浓度为10ug/孔,其余步骤同上。
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